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金沙4066总区生物提供染色质免疫共沉淀(CHIP)实验检测服务
染色质免疫共沉淀(Chromatin Immunoprecipitation),简称CHIP;是目前唯一研究体内DNA与蛋白质相互作用的方法,它不仅可以检测体内反式作用因子与DNA的相互作用,还可以用来研究组蛋白的各种共价修饰与基因表达关系。
ChIP原理及应用
在活细胞状态下,使用甲醛将蛋白质-DNA复合物进行固定,并通过超声或酶切将染色质打断为一定范围内的小片段,随后用抗体特异性识别抗原,特异性地富集目的蛋白结合的DNA片段,然后对DNA片段进行纯化与检测(如qPCR,基因芯片,高通量测序等)。ChIP广泛应用于检测转录因子与DNA的动态结合,组蛋白各种共价修饰与基因表达的关系。
ChIP实验研究转录因子,调控因子结合的DNA和组蛋白结合的NDA操作上最大的区别是什么?
ChIP实验中由于组蛋白在染色质中表达相对较高,表达也较稳定,转录调控因子表达水平很低,往往是瞬时表达。所以组蛋白研究起来更为容易,一般需要105-106个细胞即可完成一个ChIP反应。研究起始样本量(细胞,组织)要是组蛋白的10倍,一般每个反应至少需要107个细胞。另外有些转录因子比较大,往往结合多个核小体,因此在染色质断裂的时候,不太适合使用酶法的处理方式,建议使用超声断裂染色质的方法。因为酶法是化学处理,消化的位点往往比较均一,多是在核小体的连接处,酶消化有可能将核小体断裂的同时打断转录因子与DNA的结合。
ChIP实验中使用超声方法断裂染色质温度不易控制,可能会使蛋白变性,影响ChIP结果,有没有较好的优化方案?
ChIP实验中超声的优化一般从如下几个方面考虑:
1 不建议重复已发表的剪切方案而不进行优化。当仪器不同于文献中所使用的仪器时,尤其如此。
2 目前有各种超声破碎仪器,水浴和基于探头的。在使用基于探头的超声破碎仪时,选择一个适用于您的样品体积的探头。
3 在任何情况下,剪切参数都应当根据您的样品体积、细胞密度和细胞类型而优化。
4 优化应当包括功率设置(超声时间 vs. 间隙时间/休息时间)以及获得长度为200 – 1000 bp的DNA片段所需的剪切循环数,每个优化实验只优化一种参数;
5 注意时间和功率设置。过度破碎和太高功率设置会损害在免疫沉淀步骤中的表位。降低ChIP信号。
6 始终保持裂解液冰冷,间断超声,而不是连续,因为超声处理产生热量会使染色质变性。
7 在超声破碎过程中避免气泡。泡沫会导致蛋白质的表面变性,可能使染色质损失在气泡中。为了避免这种情况,一开始设为较低功率,再逐步提高。
8 在优化条件时,每个超声破碎循环后通过琼脂糖凝胶电泳分析DNA片段的长度。剪切不足所产生大的不溶蛋白质:DNA:RNA复合物可能堵塞琼脂糖凝胶的孔,并延缓电泳过程。通过消化蛋白质、逆转交联、酚:氯仿提取和沉淀来纯化DNA。
金沙4066总区生物提供染色质免疫共沉淀(CHIP)实验检测服务